免疫組化操作規(guī)程 一、實(shí)驗(yàn)器材 微波爐、吹風(fēng)機(jī)、組化筆、濕盒、烤箱、振蕩器、染缸、光學(xué)顯微鏡、純木漿衛(wèi)生紙、計(jì)時(shí)器和通風(fēng)櫥等。 二、實(shí)驗(yàn)原理與意義 免疫組織化學(xué)又稱免疫細(xì)胞化學(xué),是指帶顯色劑標(biāo)記的特異性抗體在組織細(xì)胞原位通過抗原抗體反應(yīng)和組織化學(xué)的呈色反應(yīng),對(duì)相應(yīng)抗原進(jìn)行定性、定位、定量測(cè)定的一項(xiàng)新技術(shù)。它把免疫反應(yīng)的特異性、組織化學(xué)的可見性巧妙地結(jié)合起來,借助顯微鏡(包括熒光顯微鏡、電子顯微鏡)的顯像和放大作用,在細(xì)胞、亞細(xì)胞水平檢測(cè)各種抗原物質(zhì)(如蛋白質(zhì)、多肽、酶、激素、病原體以及受體等)。 三、試劑配制 0.01 M PBS(pH 7.34 ):9.0 g NaCl + 50 ml 0.2 M PB加雙蒸水至1000 ml;1000 ml 0.2M PB (pH 7.4)=5.93 g NaH2PO4·2H2O+58.02 g Na2HPO4·12H2O in 1000 ml雙蒸水或=190 ml A + 810 ml B(A. 0.2 M NaH2PO4·2H2O:15.6 g in 500 ml ddH2O;B. 0.2 M Na2HPO4·12H2O:71.632 g in 1000 ml dH2O)。 Citrate Buffered Saline(0.01 M檸檬酸緩沖液,PH6.0):28 ml A + 72 ml B + 200 ml ddH2O(A.Citrate acid(檸檬酸):10.5 g 加雙蒸水至1000 ml;B.Citrate sodium(檸檬酸鈉):29.41 g加雙蒸水至1000 ml)。 細(xì)胞通透液:由終濃度分別為0.3%雙氧水和0.3%Triton X-100混合而成。配制方法是先用微波加熱的36 ml PBS,再接著加120 ul TritonX-100,并加熱一會(huì)兒,冷卻至臨用前加0.4 ml 30%H2O2。 5%羊血清或封閉血清,用PBS稀釋。 含0.03%H2O2的0.05%DAB(避光):用20×DAB(1%,10 mg/ml)5 ul+0.1 ul 30% H2O2+95 ul PBS。 一抗、二抗均用PBS稀釋。 Xylene、梯度Ethanol(100%×2、95%、80%、70%、50%)、雙蒸水、中性樹膠(封裱劑)。 蘇木精染液: 四、操作步驟 1、脫蠟、水化 60 ℃×20 min→Xylene 2 ×10 minutes; 100% absolute ethanol:2 ×5 minutes; 95% ethanol 2 minutes; 80% ethanol 2 minutes; 70% ethanol 2 minutes; distilled water:5 min; PBS洗3次×3 min。 2、細(xì)胞通透、封閉內(nèi)源性過氧化物酶 用封閉通透液浸潤(rùn)切片30 min(RT避光)。配法是用預(yù)熱40 ml PBS加120ul TritonX-100加熱幾分鐘后,臨用前加400 ul 30%H2O2。 PBS溶液洗3次×3 min。 3、抗原修復(fù)暴露抗原決定族 切片放入0.01 M檸檬酸鈉緩沖溶液(pH6.0)后,在微波爐里高火4 min至沸騰后,再加熱約6 min×4次,每次間隔補(bǔ)足液體,防止干片。 4、封閉非特異性蛋白 PBS溶液洗3次×3 min; 將切片取出,周圍水分用濾紙吸干,用組化筆在組織周圍畫上圈,在圓圈內(nèi)組織滴入5%羊血清(與二抗來源一致)后放入濕盒中,室溫30(10~30)min; 5、一抗孵育 甩去切片上的羊血清,用濾紙擦干組織周圍殘留血清,直接加入已稀釋的一抗(1:250、500、1000)后,放入濕盒中室溫1小時(shí),然后4度過夜,從冰箱中取出需37 ℃復(fù)溫45 min。 6、二抗孵育 將一抗倒掉并用PBS洗5 min×5次; 用濾紙將圓圈周圍的水吸去,加入已稀釋的二抗后放入37 ℃恒溫烤箱中30 min(回收)。 用PBS洗5次×5 min; 7、SP反應(yīng) 加入SP后放入37度烤箱中30 min。 用PBS洗5次×5 min; 8、顯色 加入DAB(快速滴入,觀察染色情況,倒掉染液),顯色時(shí)間控制在約5 min(3~10 min),由鏡下觀察顏色控制時(shí)間。0.05%DAB(避光)(1:20儲(chǔ)備液):5 ul 20×DAB+0.1 ul 30% H2O2+95 ul PBS。1%DAB儲(chǔ)備液的配制:50mg DAB+5ml 0.05 mol/L PBS充分溶解,-20 ℃保存。 9、復(fù)染、脫水、透明、封片 用PBS 3次×3min后,用雙蒸水洗5 min; 加一大滴蘇木素染液,胞核蛋白染幾秒,胞漿或胞膜蛋白染20 s后自來水沖洗,雙蒸水洗5 min,再用PBS返藍(lán)5 min。 脫水:50% ethanol 1-2 min, 70% ethanol 1-2 min 95% ethanol 1-2 min; 95% ethanol 1-2 min; 100% absolute ethanol: (1-2) min; 100% absolute ethanol: (1-2) min。 透明:Xylene 1×(1-2) min→Xylene 2×(1-2) min 封片:中性樹膠。 五、注意事項(xiàng) 蘇木素復(fù)染時(shí)間需要摸索,尤其陽(yáng)性染色也在細(xì)胞核上。 DAB顯色時(shí)間需要達(dá)到*化,鏡下觀察達(dá)到陽(yáng)性染色明顯但背景不太深。 抗體孵育時(shí)間和抗體濃度需要摸索。尤其一抗孵育在4度過夜。 切片脫蠟和水化要充分;加反應(yīng)液時(shí)要覆蓋組織充分;每次加液前甩干洗滌液,但又防止干片;用組化筆畫圈時(shí)盡量畫大一點(diǎn),否則墨水排斥液體,引起片周邊干片。 片子著色不均勻的原因如下: 脫蠟不充分??梢?0 ℃烤20 min,立即放入新鮮的xylene1; 水化不全。應(yīng)經(jīng)常配制新鮮的梯度乙醇; 抗體沒混勻。用移液器充分混勻一抗/二抗等試劑; 抗體孵育時(shí),切片放傾斜; 抗體孵育后PBS沖洗不充分。 制片厚薄不均勻等問題。染片盒不平,切片傾斜。 一抗從4 ℃拿出后,為什么有人說要37度復(fù)溫,目的是什么? 一方面,防止切片從4 ℃直接放入PBS易脫片; 另一方面,使抗原抗體結(jié)合更穩(wěn)定。一般不需要,但對(duì)表達(dá)較弱的抗原可能有用,4 ℃和37 ℃度時(shí)分子運(yùn)動(dòng)方式不同,前者分子碰撞機(jī)率和運(yùn)動(dòng)速度小于后者,后者結(jié)合更快,但敏感性也提高了并易造成非特異染色。 切片染色后背景太深,不易區(qū)分特異性與非特異性著色? 抗體孵育時(shí)間過長(zhǎng)、抗體濃度高易增加背景著色。這可通過縮短一抗/二抗孵育時(shí)間、稀釋抗體來控制; 一抗用多克隆抗體易出現(xiàn)非特異性著色,建議試用單克隆抗體看看; 內(nèi)源性過氧化物酶和生物素在肝臟、腎臟等組織含量很高,需要通過延長(zhǎng)滅活時(shí)間和增加滅活劑濃度來降低背景染色 非特異性組分與抗體結(jié)合,這需要通過延長(zhǎng)二抗來源的動(dòng)物免疫血清封閉時(shí)間和適當(dāng)增加濃度來加強(qiáng)封閉效果; |